Comments: |
ЖАДНО, ЖАДНО ХОЧУ! (и про секрет CXCR5 тоже хочу, если отдашь :) чисто из профессионального любопытства, я сама никогда не сталкивалась с этой проблемой но посмотреть могу...
(у меня, конечно, есть куча идей, как можно повозиться с такой дурной прокраской... но эти перцы из ПНАС либо не заморочились, либо там все хитро)
Там все надо слегка через одно место, чтоб работало. Фиксатор от одной компании с протоколом от фиксатора другой и никак иначе. ;) Ну это часть.
Через мои руки прошло много разных GFP+ клеток, и они внезапно очень по-разному переносят фиксацию - была одна GFP+ перевиваемая лимфома, которая ВООБЩЕ ничем не убивалась, по-моему, но там такой силы был сигнал, что мне приходилось ND фильтр присобачивать к 525/15. А вот последний мой GFP был как та примадонна - криво посмотришь и он все, чпок.
У нас GFP-Foxp3, их и так там писюн положительных в мышке, так после фиксации GFP пропадал больше чем на 50%. Протокол настрочила. :)
Я тебе писала из горящего танка, в смысле за десять минут до того, как идти вести трехчасовой семинар про проточку :) и умотала в лабу :) вот пришла домой и сейчас буду читать!
АААА, и поздравляю-поздравляю-поздравляю с удачной отправкой 30 кг!
Ура, меня понимают!! Я на тебя очень надеялась. Давай, присылай мне что у тебя входит в набор окраски вместе с GFP. От этого протокол будет меняться чуток, я детали поясню. Секрет на CXCR5, как ты можешь догадаться, с ним тоже напрямую связан.
From: | f3@lj |
Date: | February 11th, 2014 - 10:48 am |
---|
| | | (Link) |
|
Ты крута! Правда, наша биолог в лабе владеет только английским, я опухну пересказывать, да ещё и ошибусь в ста местах :))
Если вы не работаете с GFP, то не надо мучаться, пожалуй. :) А вот если работаете, то скажи ей, is it possible to fix GFP+ cells for flow? И услышь в ответ стенания, что это невозможно чисто технически.
From: | f3@lj |
Date: | February 11th, 2014 - 11:17 am |
---|
| | | (Link) |
|
Ага :)) попробую.
Я давно гордилась своими френдами - какие они у меня все талантливые и замечательные. Но ты просто гений! Горжусь втройне.
Гений - это все-таки для людей явно поумней. А я технический трублешутер. Но крутой, похоже, чо. :))
Срочно создавать создавать продукт, а то сейчас есть позиция ученого, а завтра нету, а так есть план Б и вероятно свой маленький свечной заводик. В Швеции немало профессоров так себе на интересную жизнь заработали.
Увы, свечной заводик мне не грозит. Я чужие готовые реагенты использую, просто чуток необычно. ;)
(заинтересованно) что, alexa488 поверх прокрашиваете?
Нет, GFP удалось родной сохранить, без усиления чем-либо вторым этапом. :)
Хм, а почему они (лекторы на воркшопах) такое заявляли? Известно же, что если у тебя флюоресцентный белок в цитозоле, то высока вероятность похерить все фиксацией/пермеабилизацией метанолом (этанолом) в морозильнике, иногда просто вымывает нафиг все, а остается только что-то вменяемое при локализации белка в мембране. "Необычная" фиксация трихлоруксуской обычно спасает в таких особо запущеных случаях.
Да, если ваш протокол действительно работает универсально, то стоит его коммерциализировать. Иначе, все равно, рано или поздно ваш подход чуток модифицируют и тогда опять покупать продукт у "дяди", а так вы сами имеете шанс стать буратинкой с недеревянными мозгами и шансом работать на себя :).
Да мой протокол не включает в себя ничего уникального, кроме как видоизменение протоколов на коммерческие киты для фиксации. Тут нечего коммерциализировать, совсем. :) А фиксация нужна для FOXP3. Он внутриядерный, так что "легкие" или необычные способы фиксации, при которых есть шанс сохранить GFP, не прокатывают.
Это называется инновация процессинга, но вы правы, свечной заводик, увы, пока не грозит, пока.... может вы завтра что-то еще придумаете :)
А фиксировать то зачем? CXCR-ки надобно сразу мерять
Ну не всегда то что надо в реальности совпадает с тем что надо по плану. :))
C CCR и CXCR еще один трабл- на замороженных- размороженных семплах многие не поймаешь (как, к примеру CCR7 для naive/memory subsetting)
Как недавно (мной) выяснилось, все эти маркеры надо колупать индивидуально. Например, CCR7 отлично красится и на замороженных, если они более-менее живые. Но надо делать инкубацию 30 минут при 37 градусах внутри инкубатора (чтоб и CO2 к ним приходил). Попробуйте - будет отлично. И на человеческих, и на мышиных. CXCR5 напротив этого не переносит категорически. Если у вас размороженные клетки дают много грязи и дохляка - обращайтесь. :) Научу морозить и размораживать так, что и пять лет спустя в жидком азоте ни viability, ни фенотип, ни деления в течение 4 дней не отличаются от свежих.
Ну не отличаются, но нейтрофилы все конечно же сдохнут и исчезнут. Остальные - нет
Да все с ними ок, с этими материалами я лет 15 работаю, как и с флоу. Но "свежачок" все-таки- релевантнее всего.
PD-1 коэкспрессия, ага :)
Ну у меня еще там Foxp3 и BCL6, оба только внутри. PD1 нормально superficial ловится.
А флоу в "глянцах" весьма часто выглядит, как shit...Ибо деды-ревьюеры, в основном, в современных методах не понимают.
Вот! Наконец-то я эту фразу вижу от кого-то еще. :) А то ей богу, я говорю что оно shit, а на меня все смотрят косо - мол, PNAS же. Блин. И я тот же аргумент использую - мол, ну а кто красил-то, сам ОН, что ли? Нифига, технишен или студент. А потом послали на ревью тем, кто сам цитометрию в жизни ни разу не гонял.
Именно так все и происходит. Красивая цитометрия в Nature Imm бывает только от Марио
Я знаю Марио только того что с усами и прыгает хорошо. :) 
Да нечего там, это ж просто решение технической задачки. :)
Публикуйся, бабка! Публикуйся, любка! Публикуйся, ты моя Сизая голубка!
:-)
Да нечего там. Просто траблшутинг. Разве что из самой окраски что-то получится. ;)
Вспоминается "Женитьба Бальзаминова": "Добрая-добрая!"
Снимаю шляпу, чё.
И перед добротой - тоже.
Дык все равно в ЖЖ это мало кому надо ;))
Ну, судя по камментам, "в теме" чуть больше, чем никто ))
(Кстати, польщен. Велкам))).
Добрый день! Да, страстно хотела бы узнать секрет. Я крашу клетки для флуоресцентной микроскопии, клетки прикрепленные, распластанные, смешанные культуры клеток, экспрессирующих GFP и mKate2. mKate2 диффузный, GFP диффузный или сшитый с белком межклеточных адгезионных контактов Е-кадгерином.
При фиксации 3,7% параформальдегидом диффузные GFP и mKate видны хорошо, но препараты нестабильны, через пару недель флуоресценция расплывается. После пермеабилизации тритоном х-100 (0,5% 5 минут) или при фиксации метанол:ацетон 1:1 15 минут флуоресценция пропадает. Пермеабилизация принципиальна при параллельной окраске антителами (на фокальные контакты, кортактин, Е-кадгерин) или фаллоидином.
GFP красится прекрасно антителами Millipore AB3080P (кролик) и Rockland 600-301-215 (мышь) после фиксации параформальдегид +тритон. После метанол-ацетона не красится. Millipore AB16901 (курица) не красит совсем после фиксации согласно протоколу (вариация параформальдегид+тритон).
Буду очень признательна, если поделитесь ноу-хау. Очень нужна и нативная флуоресценция, и любые возможные варианты фиксации под куриные антитела.
ОК, вечером напишу в личку. Только вот проблема - у меня протокол-то этот на цитометрию заточен. Может не сработать на микроскопию.
abcam ab13970 GFP (chicken) работают прекрасно на тканях фиксированных 4% pfa. красили на вентане, лейке и ручками. нативный мы не рассматриваем, потому что это почти артефакт после фиксации. для лучшего эффекта стоит использовать alexa-ХХХ от invitrogen в конфигурации, подходящей к вашей системе определения (мы используем биотинилированные вторичные и tyramide-alexa-xxx) ну и на всяк случай, e-cadherin антитела - BD Transduction #610181 (если что, красим до 4 антител последовательно)
таня, можно и мне секреты мастерства, я их врагу не продам, но попробую на тканях тож. в ответ, могу помогать с антителами, что работают для гистохимии (автоматической, правда). еще могу добавить по вопросу коммерциализации. это непросто, но если потрахаться (а у вас с этим - легко ;)), то можно придумать "кит", который будет включать известные всем реагенты, расфасованные в баночки "reagent a", "reagent b" etc и сопровожденные соответствующим протоколом. именно так барыги из компаний и коммерциализируют свои фокусы. там нет rocket science, а просто смекалка. помочь вам сможет ваш office of technology development и еще могу поделится страшным секретом приготовления cell pellets для гистохимии
Да я как раз и использую баночки "реагент А и В", увы. :) cell pellets для гистохимии хочу! Я умею делать 2 путями: на специальной центрифуге цитоспин (если у меня клеток много), и олдскульные мазки недрогнувшей рукой (если клеток кот наплакал). Получается прилично, если цитоспин не плюнет мимо лунки клетками, что иногда бывает. В мазках, которые я потом просто на воздухе сушу, иногда проблема с тем, что клетки при мытье отрываются и покидают меня, а их и так мало. Поэтому очень хочу другие способы. Особенно чтоб надежно и бережно прикрепить писюн например тысяч в пять-десять лимфоцитов. Протокол послала личкой.
получил, спасибо. сижу, втыкаю... дело осложняется тем, что непонятно, что в составе буферов. погляжу мсдс, поговорю с умными людьми. фишка, в нашем случае, в том, что мы страшно не любим мороженные ткани. минимум - фиксированные и мороженные, идеально - фиксированные и парафин. так что для нас этот протокол сработает только в случаях упорства или ошибок. покраска с анти-GFP идет отлично на любых тканях, а учитывая, что только правильно сделанные парафиновые срезы дают прекрасную картинку (морфология и качество), видимо так и будем. про cell pellets сейчас в личку кину.
Вот в комменте ниже Кермит дает правильный совет, что бы я пыталась сделать в этом случае. Все-таки микроскопия менее чувствительна, чем цитометрия, и если я вижу подсевший, но все еще существующий GFP на цитометре, то не факт, что он же будет виден под микроскопом. | |